王羽 王海涛 王金霞 宋文靖 刘玉倩

河北师范大学体育学院(石家庄050024)

扭转原肠胚形成同系物1(Twisted gastrulation,TWSG1)是近年发现的在维持机体铁稳态中发挥重要作用的铁调控蛋白。TWSG1主要通过抑制肠铁吸收的负调控蛋白肝铁调素(hepcidin)表达而改变机体铁状态[1]。其调控通路主要通过抑制骨形态发生蛋白(Bone morphogenetic protein,BMP)表达[2],再通过BMP和SMAD4(drosophila mothers against decapentaplegic protein)影响hepcidin合成与分泌。Hepcidin可降低肠铁吸收和巨噬细胞铁释放,调控机体铁状态[3]。本实验室前期研究表明,长时间大强度运动往往引发低铁状态,这与肝hepcidin分泌增加密切相关[4,5]。关于一次急性力竭运动后恢复过程中的铁调控机制及TWSG1的调节作用目前尚不清楚。本实验通过观察大鼠一次急性力竭运动及其恢复不同时期TWSG1、BMP6、SMAD4 mRNA表达和肝非血红素铁的变化,探讨急性运动对铁代谢的调控作用,为促进机体铁稳态恢复,防止运动性铁缺乏提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 实验动物

雄性SD大鼠30只,体重(220±10)g,购自河北医科大学动物养殖中心,动物生产许可证号:SCXK(冀)2008-1-003。使用国家标准专业啮齿类动物干饲料喂养,自由饮水,自然光照,环境温度20~25℃,相对湿度40%~50%。随即分为对照组(CG组)6只和运动组(EG组)24只。本实验在河北师范大学铁代谢分子生物学研究室进行。

1.2 训练方式

对照组不运动。运动组先在跑台上适应性运动3天,然后进行正常实验。采用跑速30 m/min、坡度为0的一次大强度急性运动直至力竭。力竭标准:大鼠腹部成匍匐状不能前进。

1.3 取材

运动组大鼠分为4组,分别在力竭运动后即刻(E0h组)、3 h(E3h组)、6 h(E6h组)、24 h(E24h组)取材。用1%戊巴比妥纳(1 ml/100g)麻醉大鼠,待大鼠无知觉后,剪开胸腔,使其心脏暴露,用注射器心尖取血,然后用灭活的DEPC水快速灌流,冲净组织内的血液。取肝组织中同一部位的样品50~100 mg装入EP管中,迅速投入液氮,以备做RNA测定。

1.4 RT-PCR 法检测肝组织 TWSG1、BMP6、SMAD4 mRNA表达

cDNA合成:取约100 mg肝组织样品,加入1 ml Trizol(Invitrogen,USA)(100 mg/1ml),在匀浆器中匀浆,磨碎后加入200 μl氯仿,使RNA溶解到氯仿中,震荡后12000 g离心15 min。然后提取上清液加入异丙醇析出RNA沉淀,震荡后12000 g离心10 min,沉淀后的RNA用75%乙醇清洗2遍,晾干加入灭活的DEPC水测定浓度。提取总RNA后开始PCR仪中反转录进行cDNA的合成。采用两步法70℃、10 min,42℃、1h,75℃、15 m i n合成。

PCR 引物碱基序列参考 Tanno[1]和 Babitt等[6,7]的报道,由上海生工合成,内参为β-actin[5]。PCR引物序列β-actin mRNA序列为上游引物5’-ggtcacccacactgtgcccatcta-3’,下游引物 5’-gaccgtcaggcagctcacatagctct-3’,TWSG1 mRNA 序列为上游引物 5’-agggggcgtggacattg-3’,下游引物5’-ctgtgtctccccgtgtcc-3’,BMP6 mRNA 序列为上游引物 5’-gtgtgggcctccgaagaa-3’,下游引物 5’-acactcagctggagtcccatgt-3’,SMAD4 mRNA序列为上游引物5’-caacatccaccaagtaatcgc-3’下游引物5’-ctctcaatagcttctgtcctg-3’。

1.5 肝非血红素铁测定

参照本实验室以往的实验方法[8]。取肝组织用去离子水冲洗后烘干,加入12.5倍体积混合酸,消化20 h。取0.025 ml上清液及铁标准液(Sigma),加入染色剂(bDA,Sigma)1.25 ml,10 min后于540 nm波长测定。

1.6 统计学分析

所有数据均采用SPSS 11.0软件进行单因素方差分析(One-Way ANOVA),实验数据以平均数±标准差(±s)表示,显着性水平为P<0.05,非常显着性水平为P<0.01。

2 结果

2.1 肝TWSG 1、BMP 6和SMAD 4 mRNA表达

图1显示,E3h组TWSG1 mRNA表达量显着低于CG组和E24h组(P<0.01),E24h组显着高于其它各组(P<0.01)。E3h组BMP6 mRNA表达显着高于其它各组(P<0.01),E24h组显着低于其它各组(P<0.01)。E3h组SMAD4 mRNA表达显着高于其它各组(P<0.01),E24h组显着高于CG组(P<0.01),但显着低于E6h组(P<0.05)。

2.2 肝非血红素铁含量

E3h组肝非血红素铁显着低于其它各组(P<0.01,P<0.05),E24h组显着高于运动后其它各组(P<0.01,P<0.05),但与CG组相比无明显差异(P>0.05)(表1)。

图1 一次急性力竭运动后大鼠肝铁代谢相关调控基因mRNA表达(n=6)

表1 一次急性力竭运动后大鼠肝非血红素铁含量变化

3 讨论

3.1 一次急性力竭运动后肝TWSG1和BMP6及SMAD4 mRNA的时相性变化

2000年[9]和2001年[10]研究者在《Nature》发表论文,指出果蝇和蛙胚胎中的TWSG1通过抑制BMP途径调控胚胎的生长发育。此后,关于TWSG1的研究主要集中在营养及胚胎的神经、骨等的发育中[11,12]。直到随着对铁代谢中BMP调控通路的逐渐认识[13],发现TWSG1通过BMP抑制肝铁调素(hepcidin)表达,影响机体铁状态,TWSG1与铁代谢才引起学者关注[1]。进一步研究表明,TWSG1主要通过下调BMP/SMAD信号通路而抑制hepcidin表达,维持机体铁的动态平衡[14-17]。本实验中,大鼠一次急性运动后及不同恢复时间TWSG1表现出明显的时相性变化,运动后3h水平较低,而运动后24h明显增高。TWSG1是对hepcidin转录有抑制作用的基因。而促进hepcidin转录的调控基因BMP6和SMAD4却呈现相反变化趋势,运动后3h水平较高,运动后24h明显下降。这验证了以往研究的结论,TWSG1对BMP6和SMAD4信号通路起抑制作用,TWSG1、BMP6和SMAD4在急性运动中参与调控机体铁状态。铁调素调节蛋白(hemojuvelin,HJV)是位于细胞膜上的一种膜蛋白,在肝细胞、骨骼肌和心肌中均有表达[18]。BMP6在BMP辅助受体-铁调素调节蛋白的参与下与BMP6受体结合,促进位于细胞表面的SMAD1/5/8(转化生长因子β家族成员配体)磷酸化[19,20]。这些激活的SMAD 可依次与SMAD4结合形成复合体,该复合体移动到细胞核调节hepcidin转录[21]。急性运动后不同恢复时间的HJV表达变化还需进一步研究。

3.2 大鼠一次急性力竭运动后肝非血红素铁的动态变化

除了受TWSG1调控,BMP6还可感受机体铁含量变化,通过铁调素调节铁代谢,维持机体铁稳态[22]。肝是机体重要的储铁器官,其中血红素铁是功能性铁,非血红素铁主要是铁蛋白、含铁血黄素等储存铁[23]。本实验结果显示,急性力竭运动后即刻和运动后3 h,肝非血红素铁显着下降,说明机体运动消耗大量铁,为了维持铁稳态,释放储存铁进入循环系统。运动后24 h肝铁储存逐步恢复,这可能与肝细胞膜上的铁摄入蛋白表达量升高有关;也可能与机体铁消耗随运动停止而逐渐下降,肝铁释放减少;还可能是巨噬细胞储存的铁释放及肠铁吸收增加,增加循环系统铁量等有关。其机制仍需研究。

本实验中,肝非血红素铁变化趋势恰与TWSG1的时相性变化一致,推测可能是在运动后初期,机体对运动产生适应性调节,肝贮存铁被动员进入循环系统,增加了血液中的铁含量。为了维持机体铁稳态,TWSG1表达下降,减少对BMP6和SMAD4的抑制,促进hepcidin表达,而降低贮存铁释放和肠铁吸收。随着肝非血红素铁大量损耗,血清铁也逐渐下降[23],运动后机体为了恢复肝铁贮存量,TWSG1表达上升,抑制BMP6/SMAD4通路,降低hepcidin表达,促进肠铁吸收,维持机体铁稳态。运动后24h,TWSG1表达水平仍较高,而BMP6/SMAD4表达较低,表明一次急性力竭运动对机体铁稳态的影响在运动后24h时仍未完全恢复,如果此时继续大强度运动,可能造成机体铁代谢紊乱,诱发运动性铁缺乏甚至运动性贫血。本实验室前期实验结果说明了这一点[4,5,24]。

此外,在血红蛋白形成前红细胞分化的早期阶段,TWSG1表达较高[1],说明TWSG1能更早反映铁代谢变化。但能否考虑通过检测血清TWSG1变化,及时调整运动员训练计划,防止出现铁代谢紊乱,尚缺乏深入研究。

4 总结

本次实验发现,一次急性力竭运动中TWSG1、BMP6及SMAD4通路对机体铁状态发挥重要调控作用,一次力竭性运动对机体铁稳态有较大影响,如果长时间进行大强度运动而恢复时间不足,机体可能出现铁代谢紊乱。

[1]Tanno T,Porayette P,Sripichai O,et al.Identification of TWSG1 as a second novel erythroid regulator of hepcidin expression in murine and human cells.Blood,2009,114(1):181-186.

[2]Chang C,Holtzman DA,Chau S,et al.Twisted gastrulation can function as a BMP antagonist.Nature,2001,410(6827):483-487.

[3]Nemeth E,Tuttle MS,Powelson J,et al.Hepcidin regulates cellular iron efflux by binding to ferroportin and inducing its internalization.Science,2004,306(5704):2090-2093.

[4]刘树欣,王海涛,刘玉倩,等.运动性低血色素形成过程中大鼠肝脏HJV mRNA表达及血清Hepcidin含量的变化.体育科学,2011,31(3):53-57

[5]Liu YQ,Chang YZ,Zhao B,et al.Does hepatic hepcidin play an important role in exercise-associated anemia in rats?Int J Sport Nutr Exerc Metab,2011,21(1):19-26.

[6]Babitt JL,Huang FW,Xia Y,et al.Modulation of bone morphogenetic protein signaling in vivo regulates systemic iron balance.J Clin Invest,2007,117(7):1933-1939.

[7]Andriopoulos B Jr,Corradini E,Xia Y,et al.BMP6 is a key endogenous regulator of hepcidin expression and iron metabolism.Nat Genet,2009,41(4):482-487.

[8]Liu YQ,Duan XL,Chang YZ,et al.Molecular analysis of increased iron status in moderately exercised rats.Mol Cell Biochem,2006,282(1-2):117-123.

[9]Oelgeschla M,Larraín J,Geissert D,et al.The evolutionarily conserved BMP-binding protein twisted gastrulating promotes BMP signaling.Nature,2000,405(6788):757-763.

[10]Scott IC,Blitz IL,Pappano WN,et al.Homologues of Twisted gastrulating are extra cellular cofactors in antagonism of BMP signaling.Nature,2001,410(6827):475-478.

[11]Ambrosio AL,Taelman VF,Lee HX,et al.Crossveinless-2 is a BMP feedback inhibitor that binds chordin/BMP to regulate xenopus embryonic patterning.Dev Cell,2008,15(2):248-260

[12]Schmidl M,Adam N,Surmann-Schmitt C,et al.Twisted gastrulation modulates bone morphogenetic protein-induced collagen II and X expression in chondrocytes in vitro and in vivo.J Biol Chem,2006,281(42):31790-31800

[13]Xia Y,Babitt JL,Sidis Y,et al.Hemojuvelin regulates hepcidin expression via a selective subset of BMP ligands and receptors independently of neogenin.Blood,2008,111(10):5195-5204.

[14]雷宇华,段相林,常彦忠.骨形态发生蛋白6对机体铁代谢调控的机制.生理科学进展,2010,41(6):475-477.

[15]Wu X,Yung LM,Cheng WH,et al.Hepcidin regulation by BMP signaling in macrophages is lipopolysaccharide dependent.PLoS One,2012,7(9):e44622.

[16]Zhang AS.Control of systemic iron homeostasis by the hemojuvelin-hepcidin axis.Adv Nutr,2010,1(1):38-45.

[17]Finberg KE,Whittlesey RL,Fleming MD,et al.Down-regulation of Bmp/Smad signaling by tmprss6 is required for maintenance of systemic iron homeostasis.Blood,2010,115(18):3817-3826.

[18]Przybylowski P,Koc-Zorawska E,Glowinska I,et al.Hemojuvelin and iron metabolism in kidney and heart allograft recipients.Transplant Proc,2013,45(1):391-393.

[19]Babitt JL,Huang FW,Wrighting DM,et al.Bone morphogenetic protein signaling by hemojuvelin regulates hepcidin expression.Nat Genet,2006,38(5):531-539

[20]Patel N,Masaratana P,Diaz-Castro J,et al.BMPER protein is a negative regulator of hepcidin and is up-regulated in hypotransferrinemic mice.J Biol Chem,2012,87(6):4099-4106.

[21]Parrow NL,Gardenghi S,Ramos P,et al.Decreased hepcidin expression in murine β-thalassemia is associated with suppression of Bmp/Smad signaling.Blood,2012,119(13):3187-3189.

[22]Meynard D,Kautz L,Darnaud V,et al.Lack of the bone morphogenetic protein BMP6 induces massive iron overload.Nat Genet,2009,41(4):478-481.

[23]常彦忠,段相林.铁代谢失衡疾病的分子生物学原理.北京:人民卫生出版社,2012:124.

[24]孙娟,王海涛,刘玉倩,等.长时间大强度运动对大鼠骨骼肌BMP6 mRNA表达及铁贮存的影响.中国运动医学杂志,2012,31(5):409-413.