陈婉燕,李家速△,毛方圆综述,姚忠祥审校

(第三军医大学:1.学员旅;2.基础部生理学教研室,重庆400038)

少突胶质前体细胞(OPC)分化为成熟少突胶质细胞(OL)是中枢神经系统(CNS)神经元轴突髓鞘形成的关键环节。诸多转录因子,如性别决定区Y基因相关高可变区基因10(SOX10)、ZFP191等促进因子和Hes5、SOX6、PDGFRα及ZFP238等抑制因子,在细胞分化过程中发挥着重要的调控作用[1]。近年来,渐成说机制(epigenetic mechanisms)在调控OL分化过程中同样发挥重要作用,包括核小体组蛋白脱乙酰化酶共价修饰、染色质重塑、DNA甲基化及非编码RNAs介导的基因沉默等[2]。微RNA(miRNA)是一类长度约22个核苷酸的内源性单链非编码RNA,表达具有组织特异性,遗传保守性。成熟miRNA 5′端的核心序列(约2~8 nt的种子序列)与靶m RNA的3′端非编码区(UTR)碱基互补配对,引导RNA诱导的沉默复合体(RNA-induced silencing complex,RISC)对靶基因转录后抑制或降解,下调靶基因(约人类基因组30%)的表达[3],发挥相应miRNA的生物学功能[4]。近年来,大量研究证实miRNA在细胞增殖分化、神经发生、肿瘤形成等诸多生物过程中发挥重要作用,尤其是miR-219、miR-338等OL系特异性miRNA的发现及其功能研究的开展[5-6],miRNA已成为多发性硬化、脑白质营养不良症等脱髓鞘疾病髓鞘再生领域的研究热点。本文就miRNA调控OL分化及其在脱髓鞘疾病中的研究进展综述如下。

1 特异性miRNA调控OL分化和髓鞘形成的机制

迄今为止,miRNA有数条通路可以促进OL分化和髓鞘形成,挽救和修复髓鞘形成缺陷,如抑制保持OPC未分化状态的负性基因,增加OPC和OL的数量,抑制不恰当的非OL系但却在OPCs或OLs中高水平表达的调控因子等[7],从而为脱髓鞘疾病髓鞘再生提供新的思路。

1.1 抑制保持OPC未分化状态的负性基因 将miRNA引入对OL分化作用的研究,利用miRNA成熟关键酶Dicer1敲除小鼠模型证实miRNA功能缺失会导致CNS髓鞘形成延迟及OL分化异常,OPC没有进一步分化为成熟的形成髓鞘的OL而是广泛增殖[5-6],可见成熟miRNA对正常OL分化和CNS髓鞘形成的关键性作用。miRNA microarrays和qRTPCR分析等发现有数个miRNA在OL分化的动态过程中表达显着变化[8],其中miR-219和miR-338的表达在围产期的急剧增长与此期OL成熟作用的开始相一致[6]。miRNA功能性研究和拟态(mimics)表明,miR-219可促进表达早期和晚期OL分化标记物,能部分挽救Dicer1缺失导致的OL分化缺陷引起的髓鞘形成障碍,过早产生大量MBP和形态多样的成熟OLs;而miR-138只能促进表达早期OL分化标记物(CNP+MBP+MOG-),可能与其延伸OL分化的未成熟阶段,使得更多的未成熟OLs缠绕到轴突周围,拓宽终末分化的OLs选择和准确地在轴突旁生成髓鞘的时间窗有关[5]。

为了弄清楚miRNA调控OL分化的具体机制,两个小组在研究了相关miRNA表达模式后筛选TargetScan、miRanda及mirBase等数据库,找寻算法预测的、在OPC高表达、在OL分化过程中被高度抑制的miRNA预测靶基因。虽然miR-219、miR-338缺乏同源序列,但此二者都被预测靶向负性调节OL分化的转录因子,如PDGFRα、SOX6、Hes5及ZFP238等候选靶标。研究利用携有miR-219、miR-338及其相应反转序列的质粒载体分别转染HEK293、COS7细胞,而荧光蛋白报道分子下游区为SOX6和Hes5的3′UTR,抑制作用以预测结合位点的存在为前提。研究发现miR-219、miR-338的过表达都显着降低了携有Sox6和Hes5 3′UTR预测结合位点的荧光蛋白报道分子的活性。而种子序列及预测结合位点的突变都将影响这种抑制作用的产生,可见miRNA正是与这些位点结合,从而发挥对分化抑制因子的直接抑制作用,进而促进OL分化成熟。

1.2 增加OPC和OL数量 研究发现由同一前体转录本加工得到的miR-17-92家族,包括miR-17、-18a、-19a、-20a、-19b和-92a,尤其是miR-19b,在控制OL数量中起着重要作用[9]。研究通过使用Cre-loxP重组系统和2′,3′-环核苷酸3′磷酸二酯酶(Cnp)启动子,敲除E18.5小鼠胚胎Dicer1(Cnp-Cre-Dicer),发现小鼠大脑中OL数量减少约40%,但不是在脊髓中,可见miRNA在脊髓和大脑发育过程中存在不同的作用机制。贺雪莲等[10]也发现了OL相关miRNA差异性调控大脑和小脑OPCs的增殖。

基因存在论(gene ontology)提示肿瘤抑制基因PTEN,可能是miR-19b的预测靶标。miR-19b的过表达通过激活其下游PI3K/Akt/m TOR信号通路靶点的磷酸化来下调OPC中PTEN的蛋白水平,发挥基因放大效应,能够促进细胞生长甚至肿瘤形成。miR-17-92家族的过表达能够增加生成髓鞘的OL数量,可能在少突胶质细胞瘤中也起着重要作用。

1.3 调节OL相关或非OL系基因表达 除了OL系分化特异和必需的miRNA,其他调节OL系相关或非OL系基因对OL分化及髓鞘的形成和维持也是必要的。如miR-23可通过动态调节核纤层蛋白B1(lamin B1)的表达对OL的分化成熟和髓鞘形成、维持进行调控[11]。此外,在OPC上游区,可以抑制神经祖细胞分化为神经元和星形胶质细胞,通过细微改变相关基因的表达而不至于影响其正常生理功能,从而达到调控OL分化的效果。例如,miR-184可以靶向在星形胶质细胞中与GFAP共表达的基因BCL2-like 1(Bcl2l1),从而抑制易化星形胶质细胞分化的基因,增加能形成髓鞘的成熟OL数量[6]。miR-219和miR-338也靶向调节神经元分化的基因,如神经细胞分化因子NeuroD1,Isl1和Otx2[6]。这些转录因子对皮质发育中细胞分化和神经元存活起关键作用。总之,这些研究提供了miRNA是OL分化成熟及髓鞘生成及维持的重要转录后调控作用的证据,也为脱髓鞘疾病的药物研发提供了新的靶点。

2 miRNA在脱髓鞘疾病发病机制中的作用

miRNA表达和功能的异常已被证实与多种疾病的发生发展有关。近来的一些研究表明miRNA在OL相关的髓鞘变性疾病,如多发性硬化、脑白质营养不良等,扮演了重要的角色,从而引发了对miRNA潜在的诊断价值和治疗新药研发的探索。

2.1 多发性硬化(multiple sclerosis,MS) MS是一种CNS慢性炎症性脱髓鞘疾病。免疫反应介导的OL源性病理过程是MS发病的重要事件,而OL的招募和成熟缺陷是引起MS髓鞘形成障碍和轴突损伤的重要原因。虽然已证实miRNA在OL分化和髓鞘形成及维持中的重要作用,但miRNA究竟是如何将OL和MS联系在一起的机制还不是很清楚。不过近年的研究已间接揭示了miRNA的异常调节可能参与了MS的炎性发病机制[12]。

研究发现,含较少表达IL-17的T辅助细胞(TH-17细胞)的小鼠不易感染实验性自身免疫性脑脊髓炎(EAE)。而miR-326能够通过抑制TH-17细胞里一种称作Ets-1的功能靶标的翻译来调节TH-17细胞的分化,而Ets-1是TH-17细胞分化的负性调节因子。MiR-326表达下降或增加分别延缓或加重了EAE的发生发展。在MS小鼠体内,miR-326的表达比对照组显着上调,而这个结果和该疾病的严重程度及IL-17的表达量密切相关[13]。Otaegui等[14]发现MS患者外周血单核细胞中miR-18b和miR-599可能与MS复发有一定的关联,而miR-96则可能与症状缓解有关。miRNA在其他细胞如形成髓鞘的OL中的功能研究将对理解相关疾病的发病机制起着重要作用,而其也可能会成为MS潜在的药物研发靶点。

此外,通过分析MS患者活动期和缓解期病变脑白质中的不同miRNA的表达,Junker等[15]建立了MS miRNA库,发现在疾病不同状态miRNA的组织表达有一定差别,比如miR-155,-34a和-326在活动期MS病变组织中表达显着增强,下调了其靶标调节性蛋白CD47的表达,解除了CD47对巨噬细胞和小神经胶质细胞的抑制作用,进而促进了其对髓鞘蛋白的吞噬作用。Keller等[16]通过对MS病理过程中miRNA表达谱的研究,认为利用miRNA能准确地将患病者与健康个体区分开。尤其是血清中的miR-145、miR-146a具有高度的准确性、特异性、敏感性[16-17]。这些数据表明,miRNA的表达谱将会成为诊断MS的非常有前景的生物标记,因此单个或多个miRNA表达异常的图谱将在研究MS复杂的发病机制方面发挥举足轻重的作用。未来的研究将会阐明这些小分子是否对不同亚型MS的发病机制同样适用。

2.2 脑白质营养不良症(Leukodystrophy) 迄今为止,成人染色体显性脑白质营养不良症(ADLD)是惟一与lamin B1突变有联系的疾病。lamin B1的大量复制,mRNA和蛋白质水平的大量增加,可以导致ADLD患者大脑中严重的脱髓鞘表型[18]。Lin和Fu[11]发现lamin B1的过表达将影响核膜蛋白LAP2的亚细胞定位、染色质结构及核孔复合体转运功能,并抑制OL系特异基因的表达。lamin B1的表达水平动态调节着OL成熟作用和髓鞘形成及维持。荧光蛋白报告分子和蛋白印记证实miR-23作为lamin B1的一种负性调节因子,能够剂量依赖性地消除lamin B1大量复制带来的OL成熟缺陷和髓鞘形成障碍。可见,miR-23是OL发育的正性调节因子而lamin B1是OL分化成熟作用和髓鞘形成的抑制因子。研究强调了体内miR-23精细调节lamin B1表达对控制OPC向成熟OL转化和髓鞘形成的重要性,对其作用机制的进一步研究,可能为ADLD和其他髓鞘形成障碍疾病提供新的治疗思路。

3 展 望

miRNA通过抑制维持OPC未分化状态的OL分化负性调节因子,增加OL数量,并且抑制不恰当的非OL系或在OPC和OL高水平表达的调控基因,从而在OL分化成熟和髓鞘形成及维持中发挥重要的调控作用。miRNA潜在的临床意义,在于对疾病发病机制、分型和疾病状态具有诊断和预测价值,并为脱髓鞘疾病新药的研发提供新的靶点。因此,对miRNA调控网络及其在髓鞘形成障碍疾病中OL靶向定位髓鞘再生领域仍需深入研究。此外,取得成功治疗的前提是miRNA安全高效的转导,包括miRNA的修饰和病毒等载体的使用。近来有关灵长类动物LNA(locked-nucleic-acid)介导的miRNA沉默的研究认为LNA修饰的寡核苷酸类在体内miRNA功能的研究和未来基于miRNA的基因治疗中有着较大潜能[19]。深入了解特殊疾病类型中miRNA差异表达谱,已预测靶点及其相互作用,将为相关疾病的诊断预测及治疗提供新的指导。

[1]Emery B.Transcriptional and post-transcriptional control of CNS myelination[J].Curr Opin Neurobiol,2010,20(5):601-607.

[2]Mehler MF.Epigenetic principles and mechanisms underlying nervous system functions in health and disease[J].Prog Neurobiol,2008,86(4):305-341.

[3]Lewis BP,Shih I,Jones-Rhoades MW,et al.Prediction of mammalian microRNA targets[J].Cell,2003,115(7):787-798.

[4]Eulalio A,Huntzinger E,Izaurralde E.Getting to the root of miRNA-mediated gene silencing[J].Cell,2008,132(1):9-14.

[5]Dugas JC,Cuellar TL,Scholze A,et al.Dicer1 and miR-219 are required for normal oligodendrocyte differentiation and myelination[J].Neuron,2010,65(5):597-611.

[6]Zhao X,He X,Han X,et al.MicroRNA-mediated control of oligodendrocyte differentiation[J].Neuron,2010,65(5):612-626.

[7]Dugas JC,Notterpek L.MicroRNAs in oligodendrocyte and Schwann cell differentiation[J].Dev Neurosci,2011,33(1):14-20.

[8]Lau P,Verrier JD,Nielsen JA,et al.Identification of dynamically regulated microRNA and mRNA networks in developing oligodendrocytes[J].J Neurosci,2008,28(45):11720-11730.

[9]Budde H,Schmitt S,Fitzner D,et al.Control of oligodendroglial cell number by the miR-17-92 cluster[J].Development,2010,137(13):2127-2132.

[10]贺雪莲,于洋,周永杰,等.少突胶质细胞相关microRNA差异性调控大脑和小脑神经前体细胞的增殖[J].第三军医大学学报,2011,33(16):1667-1671.

[11]Lin ST,Fu YH.miR-23 regulation of lamin B1 is crucial for oligodendrocyte development and myelination[J].Dis Model Mech,2009,2(3/4):178-188.

[12]Boneschi FM,Fenoglio C,Brambilla P,et al.MicroRNA and mRNA expression profile screening in multiple sclerosis patients to unravel novel pathogenic steps and identify potential biomarkers[J].Neurosci Lett,2012,508(1):4-8.

[13]Du C,Liu C,Kang J,et al.MicroRNA miR-326 regulates TH-17 differentiation and is associated with the pathogenesis of multiple sclerosis[J].Nature Immunol,2009,10(12):1252-1259.

[14]Otaegui D,Baranzini SE,Armaňanzas R,et al.Differential microRNA expression in PBMC from multiple sclerosis patients[J].PLoS One,2009,4(7):e6309.

[15]Junker A,Krumbholz M,Eisele S,et al.MicroRNA profiling of multiple sclerosis lesions identifies modulators of the regulatory protein CD47[J].Brain,2009,132(12):3342-3352.

[16]Keller A,Leidinger P,Lange J,et al.Multiple sclerosis:microRNA expression profiles accurately differentiate patients with relapsing-remitting disease from healthy controls[J].PLoS One,2009,4(10):e7440.

[17]Waschbisch A,Atiya M,Linker RA,et al.Glatiramer Acetate treatment normalizes deregulated microRNA expression in relapsing remitting multiple sclerosis[J].PLos One,2011,6(9):e24604.

[18]Padiath QS,Saigoh K,Schiffmann R,et al.Lamin B1 duplications cause autosomal dominant leukodystrophy[J].Nat Genet,2006,38(10):1114-1123.

[19]Elmén J,Lindow M,Schütz S,et al.LNA-mediated microRNA silencing in non-human primates[J].Nature,2008,452(7189):896-899.